用于石蜡包埋样品的荧光 TUNEL 实验步骤
A. 溶液与试剂
提供的试剂
注:保存于 -20°C 并避免冻/融循环。
- TUNEL 平衡缓冲液(1 瓶,5 mL)
- CF® 染料 TUNEL 反应缓冲液(5 小瓶,每小瓶 500 µL):避光。
- TdT 酶(1 小瓶,50 µL):作为 50X 浓缩液供应。使用期间保持在冰上。
重要提醒:TUNEL 平衡缓冲液和 CF® 染料 TUNEL 反应缓冲液含有二甲胂酸盐和氯化钴。遵循 SDS 操作并且作为有毒废物丢弃。
其他试剂(未提供)
注:使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水配制溶液。
- 二甲苯
- 乙醇,无水变性,组织学分级(100% 和 95%)。
- 10X Phosphate Buffered Saline (PBS):要配制 1 L,请将 80 g 氯化钠 (NaCl)、2 g 氯化钾 (KCl)、14.4 g 磷酸氢二钠 (Na2HPO4) 和 2.4 g 磷酸二氢钾 (KH2PO4) 添加到 1 L dH2O 中。调节 pH 至 7.4。
- 1X 磷酸盐缓冲生理盐水 (PBS) :要配制 1 L 1X PBS:请将 100 ml 10X PBS 添加到 900 ml dH2O 中。
- 含 Triton X-100 和 BSA 的1X 磷酸盐缓冲生理盐水 (PBS-TB):要配制 100 mL 1X PBS-TB,请将 10 mL 10X PBS、200 µL Triton X-100 和 0.5 g BSA (#9998) 添加到 90 mL dH2O 中,混合。调节 pH 至 7.4。
- 蛋白酶 K 溶液:为了使用,请将蛋白酶 K (#10012) 在 dH2O 中稀释至 20 µg/ml 。
- 1X 柠檬酸盐去掩蔽溶液(蛋白酶 K 溶液的可选替代物):要配制 250 ml 1X 柠檬酸盐去掩蔽溶液,请将 25 ml SignalStain® 柠檬酸盐去掩蔽溶液(10X ) (#14746) 用 225 ml dH2O 稀释。
B. TUNEL 方法
一般注意事项:
- 进行 TUNEL 测定法时,样品应保存在湿度室中。此方法期间任何时候均不允许样品干燥。
- 所有后续孵育都应在室温(20-25°C)下进行, 除非另有说明。
- 如果尝试与抗体共标记,建议使用热介导的抗原修复。
样品制备
- 脱石蜡/再水化:
- 将切片放入二甲苯的洗液中孵育 3 次,每次 5 分钟。
- 将切片放入 100% 乙醇中孵育切片 2 次,每次 10 分钟。
- 将切片放入 95% 乙醇中孵育切片 2 次,每次 10 分钟。
- 洗涤:在 PBS 中润洗两次,每次 5 分钟。
-
抗原修复:将样品与蛋白酶 K 溶液孵育 30 分钟。孵育时间和温度可能需要根据组织类型优化。
- 或者,可以使用柠檬酸盐去掩蔽溶液:在微波炉中加热浸入 1X 柠檬酸盐去掩蔽溶液中的载玻片,直到开始沸腾; 在亚沸点温度 (95°-98°) 维持 10 分钟。在实验台上冷却切片 30 分钟。
- 洗涤:在 PBS 中润洗两次,每次 5 分钟。
TUNEL 反应
- 准备:将样品与 100 µL 或足以覆盖样品的 TUNEL 平衡缓冲液孵育 5 分钟 。
- 检测:紧邻使用前,通过将 1 µL TdT 酶加入 50 µL TUNEL 反应缓冲液来配制 TUNEL 反应混合物,用于每次标记反应。移除平衡缓冲液,并将 50 µL(或足以覆盖样品)的 TUNEL 反应混合物添加至每份样品。
- 孵育:在 37°C 孵育 60 分钟,避光。组织切片可能需要在 37°C 孵育 2 小时,也需避光。
- 洗涤:在 PBS-TB 中润洗 3 次,每次 5 分钟。
- 共标记:如果需要,继续进行免疫染色以共标记。有关推荐的染色条件,请参考制造商的实验步骤。
- 封装:将样品封装于兼容性抗淬灭介质中,例如 ProLong® Gold Antifade Reagent (#9071)。
实验步骤编号:2624
用于培养细胞和冷冻组织的荧光 TUNEL 实验步骤
A. 溶液与试剂
提供的试剂
注:保存于 -20°C 并避免冻/融循环。
- TUNEL 平衡缓冲液(1 瓶,5 mL)。
- CF® 染料 TUNEL 反应缓冲液(5 小瓶,每小瓶 500 µL):避光。
- TdT 酶(1 小瓶,50 µL):作为 50X 浓缩液供应。使用期间保持在冰上。
重要提醒:TUNEL 平衡缓冲液和 CF® 染料 TUNEL 反应缓冲液含有二甲胂酸盐和氯化钴。遵循 SDS 操作并且作为有毒废物丢弃。
其他试剂(未提供)
注:使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水配制溶液。
- 10X Phosphate Buffered Saline (PBS):要配制 1 L,请将 80 g 氯化钠 (NaCl)、2 g 氯化钾 (KCl)、14.4 g 磷酸氢二钠 (Na2HPO4) 和 2.4 g 磷酸二氢钾 (KH2PO4) 添加到 1 L dH2O 中。调节 pH 至 7.4。
- 1X 磷酸盐缓冲生理盐水 (PBS) :要配制 1 L 1X PBS:请将 100 ml 10X PBS 添加到 900 ml dH2O 中。
- 含 Triton X-100 和 BSA 的1X 磷酸盐缓冲生理盐水 (PBS-TB):要配制 100 mL 1X PBS-TB,请将 10 mL 10X PBS、200 µL Triton X-100 和 0.5 g BSA (#9998) 添加到 90 mL dH2O 中,混合。调节 pH 至 7.4。
- 4% 甲醛,无甲醇 (#47746):新鲜使用。
B. TUNEL 方法
一般注意事项:
- 进行 TUNEL 测定法时,样品应保存在湿度室中。此方法期间任何时候均不允许样品干燥。
- 所有后续孵育都应在室温(20-25°C)下进行, 除非另有说明。
- 贴壁培养物中凋亡细胞松散贴壁,可能在洗涤期间丢失。如果需要,可以在上清液中捕获这些细胞并使用。
固定和通透
- 固定:样品应使用温和的交联性固定剂固定。
- 细胞:在 4% 甲醛中孵育 15 - 30 分钟。
- 未固定的冷冻组织:冷冻切制后,允许样品短暂达到室温并干燥,然后在 4% 甲醛中孵育 15 - 30 分钟。
- 固定的冷冻组织:直接推进到以下透化(步骤 3)。
- 洗涤:在 PBS 中润洗两次,每次 5 分钟。
- 透化:在 PBS-TB 中孵育 30 分钟。
- 洗涤:在 PBS 中润洗两次,每次 5 分钟。
TUNEL 反应
- 准备:将样品与 100 µL(或足以覆盖样品)TUNEL 平衡缓冲液孵育 5 分钟。
- 检测:紧邻使用前,通过将 1 µL TdT 酶加入 50 µL TUNEL 反应缓冲液来配制 TUNEL 反应混合物,用于每次标记反应。移除平衡缓冲液,并将 50 µL(或足以覆盖样品)的 TUNEL 反应混合物添加至每份样品。
- 孵育:对于细胞染色,在 37°C 孵育 60 分钟,避光。组织染色可能需要在 37°C 孵育长达 2 小时,也需避光。
- 洗涤:在 PBS-TB 中润洗 3 次,每次 5 分钟。
- 共标记:如果需要,继续进行免疫染色。参看制造商的建议,以确认一抗与这个实验步骤的固定和透化条件兼容。否则继续执行步骤 6。
- 封装:将样品封装于兼容性抗淬灭介质中,例如 ProLong® Gold Antifade Reagent (#9071)。
实验步骤编号:2608
用于流式细胞术的荧光 TUNEL 实验步骤
A. 溶液与试剂
提供的试剂
注:保存于 -20°C 并避免冻/融循环。
- TUNEL 平衡缓冲液(1 瓶,5 mL)。
- CF® 染料 TUNEL 反应缓冲液(5 小瓶,每小瓶 500 µL):避光。
- TdT 酶(1 小瓶,50 µL):作为 50X 浓缩液供应。使用期间保持在冰上。
重要提醒:TUNEL 平衡缓冲液和 CF® 染料 TUNEL 反应缓冲液含有二甲胂酸盐和氯化钴。遵循 SDS 操作并且作为有毒废物丢弃。
其他试剂(未提供)
注:使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水配制溶液。
- 1X 磷酸盐缓冲生理盐水 (PBS):要配制 1 L 1X PBS:请将 100 ml 10X PBS (#12528) 添加到 900 ml 水中。
- 4% 甲醛,无甲醇 (#47746)
- 100% 甲醇 (#13604) 或细胞透化缓冲液 (Triton™ X-100) (#39487)
- (可选)抗体稀释缓冲液:购买即用型流式细胞术抗体稀释缓冲液 (#13616),或通过在 100 ml 1X PBS 中溶解 0.5 g 牛血清白蛋白 (BSA) (#9998) 配制 0.5% BSA PBS 缓冲液。4°C 保存。
B. TUNEL 方法
一般注意事项:
- 此方法期间任何时候均不允许样品干燥。
- 除非另有备注,否则所有孵育均应在室温(20-25°C)进行 。
固定
注:固定前,贴壁细胞或组织应予以解离并处于单细胞悬液中。
注:最佳离心条件会根据细胞类型和试剂容量变动。一般,1-5 分钟 150-300g 将足以使细胞沉淀下来。
注:如果使用全血,则在固定前裂解红细胞并通过离心来洗涤。
- 通过离心使细胞沉淀下来,移除上清液。
- 按每 100 万个细胞大约 100 µl 4% 甲醛重悬细胞。混匀以解离沉淀物并防止各个细胞交联。
- 室温 (20-25°C) 固定 15 分钟。
- 通过离心用过量 1X PBS 洗涤。将上清液弃于合适的废液缸中。以 0.5-1 ml 1 X PBS 重悬细胞。继续进行透化步骤。
- 或者,细胞可在 1X PBS 中 4°C 保存过夜。
透化
注:完成 TUNEL 反应需要透化。如果免疫染色将作为 TUNEL 测定法的一部分进行,请选择与贵测定法中所用的这种或多种抗体兼容的透化方法。
- 通过温和涡旋混合的同时,向预冷的细胞中缓慢添加冰冷的 100% 甲醇至 90% 甲醇终浓度,使细胞透化。
- 在冰上透化最短 10 分钟。
- 继续进行 TUNEL 反应或将细胞在 90% 甲醇中保存于 -20°C。
或者,以细胞透化缓冲液 (Triton™ X-100) (#39487) 透化,每 100 万个细胞使用大约 100 µl。在室温孵育 10 分钟。
TUNEL 反应
注:使用血细胞计数器或备选方法计数细胞。
- 如必要,将所需数目的细胞分装到试管或孔中。(通常,每次分析 5x105 至 1x106 个细胞。)
- 通过离心分离,用过量的 1X PBS 来洗涤细胞。将上清液弃于合适的废液缸中。
- 将样品与 100 µl TUNEL 平衡缓冲液孵育 5 分钟。
- 紧邻使用前,通过将 1 µl TdT Enzyme 加入 50 µl TUNEL Reaction Buffer 来配制 TUNEL 反应混合物,用于每个标记反应。通过离心使细胞沉淀,移除平衡缓冲液并向每份样品加入 50 µl TUNEL 反应混合物。
- 在 37°C 孵育 60 分钟,避光。
- 用 1X PBS 进行离心分离来洗涤。弃去上清液。重复。
- 如果需要,继续进行免疫染色。否则继续步骤 8。
- 在 200-500 µl 1X PBS 中重悬细胞,并在流式细胞分析仪上分析。
实验步骤编号:2664