反应性 | H M R |
灵敏度 | 内源性 |
MW (kDa) | |
来源/同种型 | 兔 IgG |
产品信息
应用 | 稀释度 |
---|---|
免疫组织化学(石蜡) | 1:100 - 1:400 |
免疫荧光法(冰冻) | 1:100 - 1:200 |
免疫荧光法(免疫细胞化学) | 1:100 - 1:200 |
流式细胞术(固定/通透) | 1:50 |
注意:使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水配制溶液。
注意:在制作过程中务必随时保持切片处于湿润状态。
按照 D 部分步骤 6:
重要提示:TrueBlack® 脂褐素自发荧光猝灭剂与去垢剂不兼容。任何涉及去垢剂的步骤必须在施加 TrueBlack® Lipofuscin Autofluorescence Quencher 之前完成。
实验步骤编号:2924
注:使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水配制溶液。
切片用 1X PBS 中稀释的 4% 甲醛浸没。
注意:甲醛有毒性,仅可在通风橱中使用。
注意:所有随后的孵育都应当在室温下完成,除非另有注明需要在避光湿盒或带盖的培养皿/板中孵育,以防止干燥和荧光物质淬灭。
发布时间 2006 年 11 月
修订时间 2013 年 11 月
实验步骤编号:222
注:使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水配制溶液。
注意:细胞应当在多孔板、腔室玻片或盖玻片上直接培养、处理、固定和染色。
吸干液体,随后在细胞上覆盖一层 2–3 mm 用 1X PBS 稀释的 4% 甲醛。
注意:甲醛有毒性,需在通风橱中使用。
注意:所有随后的孵育都应当在室温下完成,除非另有注明需要在避光湿盒或带盖的培养皿/板中孵育,以防止干燥和荧光物质淬灭。
发布时间 2006 年 11 月
修订时间 2013 年 11 月
实验步骤编号:182
注:使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水配制溶液。
注:在您的实验中加入荧光细胞染料(包括活力指示染料、DNA 染料等)时,请参考染料产品网页,了解建议的实验步骤。
注:固定前,贴壁细胞或组织应予以解离并处于单细胞悬液中。
注:最佳离心条件会根据细胞类型和试剂容量变动。一般,1-5 分钟 150-300g 将足以使细胞沉淀下来。
注:如果使用全血,则在固定前裂解红细胞并通过离心来洗涤。
注:如果表位被甲醛和/或甲醇破坏,可以在固定前添加靶向 CD 标记物或其他胞外蛋白质的抗体。在固定和透化过程期间,这类抗体将保持与目的靶标结合。但注意,某些荧光团(包括 PE 和 APC)会被甲醇损坏,因此不应在透化前添加。如果您不确定,请进行小规模实验。
注:使用血细胞计数器或备选方法计数细胞。
发布时间 2023 年 6 月
实验步骤编号:2985
人, 小鼠, 大鼠
使用对人 Ki-67 蛋白的氨基末端具有特异性的重组蛋白,对动物进行免疫接种来产生单克隆抗体。
Ki-67,以其中发现它的地点(基尔大学,德国)命名,是在正在增殖的细胞中普遍表达并且在静息细胞中不存在的非组蛋白核蛋白 (1) (2)。Ki-67 可检测在 G1 期、S 期、G2 期和有丝分裂期、但不在 G0 静息期的正在增殖的细胞。研究已经证实,高水平 Ki-67 与更差的乳腺癌生存相关 (3)。研究已经探索了 Ki-67 连同其他标志物一起作为乳腺癌和其他恶性疾病中潜在的预后或预测标志物的用途 (4)。
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