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31842
Pan-Keratin (C11) Mouse mAb (Alexa Fluor® 594 Conjugate)
抗体偶联物
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Pan-Keratin (C11) Mouse mAb (Alexa Fluor® 594 Conjugate) #31842

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筛选器：
  1. IF
  2. F
使用 Pan-Keratin (C11) Mouse mAb (Alexa Fluor® 594 Conjugate) （红色）对 HeLa 细胞（左图，阳性）和 SH-SY5Y 细胞（右图，阴性）进行共聚焦免疫荧光分析。胞核用 DAPI #4083（蓝色）标记。
以浓度匹配的 Mouse (G3A1) mAb IgG1 Isotype Control (Alexa Fluor® 594 Conjugate) #8527（虚线）作为对照，使用 Pan-Keratin (C11) Mouse mAb (Alexa Fluor® 594 Conjugate)（实线）对 Jurkat（蓝色）和 MCF7（绿色）细胞进行流式细胞分析。
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31842S		 100 µl （50 次检测）

Bulk & Custom Formulation

支持性数据

反应性 H M R Mk
灵敏度 内源性
MW (kDa)
来源/同种型 小鼠 IgG1

应用关键词：

  • WB- 蛋白质印迹法
  • IP-免疫沉淀法
  • IHC-免疫组织化学法
  • ChIP-染色质免疫沉淀法
  • C&R - CUT&RUN
  • C&T - CUT&Tag
  • DB - 点印迹
  • eCLIP - eCLIP
  • IF-免疫荧光法
  • F-流式细胞术

物种交叉反应性关键词：

  • H-人
  • M-小鼠
  • R-大鼠
  • Hm- 仓鼠
  • Mk-猴
  • Vir- 病毒
  • Mi-水貂
  • C-鸡
  • Dm-黑腹果蝇
  • X-爪蟾
  • Z-斑马鱼
  • B-牛
  • DG-犬
  • PG-猪
  • Sc-酿酒酵母
  • Ce-秀丽隐杆线虫
  • Hr-马
  • GP-豚鼠
  • Rab-Rabbit
  • All-预期所有物种

产品说明

Cell Signaling Technology 的这种抗体与 Alexa Fluor® 594荧光染料偶联，并经内部测试用于人细胞的直接流式细胞和免疫荧光分析检测。该抗体显示的物种交叉反应性预计与非偶联的 Pan-Keratin (C11) Mouse mAb #4545 相同。

产品使用信息

应用 稀释度
免疫荧光法（免疫细胞化学） 1:50 - 1:200
流式细胞术（固定/通透） 1:50

保存

保存在 PBS（pH 为 7.2）、低于 0.1 % 的叠氮化钠和 2 mg/ml BSA 中。4°C 保存。切勿分装抗体。避光保存。切勿冷冻。

实验步骤

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免疫荧光法（免疫细胞化学）

A. 溶液与试剂

注意：用反渗透去离子 (RODI) 水或等效净化水制备溶液。

  1. 20 X 磷酸盐缓冲液 (PBS)： (9808) 要制备 1L 1X PBS：添加 50 ml 20X PBS 至 950 ml dH2O 中并混合。调节 pH 至 8.0。
  2. 甲醇，100%
  3. 封闭液 (1X PBS / 5% normal goat serum (#5425) / 0.3% Triton™ X-100)：要配制 10 ml：添加 0.5 ml normal goat serum 和 0.5 ml 20X PBS 到 9.0 ml dH2O 中，混匀。搅拌时加入 30 µl Triton™ X-100。
  4. 抗体稀释缓冲液 (1X PBS / 1% BSA / 0.3% Triton X-100)：要制备 10 ml，添加 30 µl Triton™ X-100 至 10 ml 1X PBS 中。充分混合后，添加 0.1 g BSA (9998)，并混合。
  5. Prolong® Gold AntiFade Reagent (#9071)，Prolong® Gold AntiFade Reagent with DAPI (#8961)。

B. 标本制备 - 培养细胞系 (IF-IC)

注意：细胞应当在多孔板、腔室玻片或盖玻片上直接培养、处理、固定和染色。

  1. 吸干液体，随后在细胞上覆盖一层 2–3 mm 冰冷的 100% 甲醇。
  2. 在 -20°C 温度下，可让细胞固定15分钟。
  3. 吸去固定液，用 1X PBS 漂洗三次，每次 5 分钟。
  4. 继续进行免疫染色操作（C 部分）。

C. 免疫染色

注意：所有随后的孵育都应当在室温下完成，除非另有注明需要在避光湿盒或带盖的培养皿/板中孵育，以防止干燥和荧光物质淬灭。

  1. 在封闭缓冲液中封闭标本 60 分钟。
  2. 封闭时，按产品网页中列出的抗体稀释缓冲液中稀释来制备一抗。
  3. 吸去封闭缓冲液，加入稀释后的一抗。
  4. 4°C 温度下孵育过夜。
  5. 用 1X PBS 漂洗三次，每次 5 分钟。
  6. 使用 Prolong® Gold Antifade Reagent (#9071) 以及带 DAPI (#8961) 的 Prolong® Gold AntiFade Reagent 盖住切片。
  7. 为达到最佳效果，应立即采用适当的激发波长检测标本。将切片平放避光 4°C 环境下，可长期保存。

发布​时间 2010 年 12 月

实验步骤编号：221

流式细胞术，针对直接偶联抗体的甲醇透化实验步骤

A. 溶液与试剂

本实验步骤中所需的所有试剂可与我们的 Intracellular Flow Cytometry Kit (Methanol) #13593 一起高效购买，或使用下文所列的货号单独购买。

注：使用反渗透去离子水 (RODI) 或同等级别的水配制溶液。

  1. 1X 磷酸盐缓冲生理盐水 (PBS)：若要制备 1 L 1X PBS：将 100 ml 10X PBS (#12528) 添加到 900 ml 水，混合。
  2. 4% 甲醛，无甲醇 (#47746)
  3. 100% 甲醇 (#13604)：用前冷却
  4. 抗体稀释缓冲液：购买即用型流式细胞术抗体稀释缓冲液 (#13616)，或在 100 ml 1x PBS 中溶解 0.5 g 牛血清白蛋白 (BSA) (#9998) 来配制 0.5 % BSA PBS 缓冲液。4°C 保存。

注：在您的实验中加入荧光细胞染料（包括活力指示染料、DNA 染料等）时，请参考染料产品网页，了解建议的实验步骤。访问 www.cellsignal.com，了解经验证用于流式细胞术的细胞染料完整列表。

B. 固定

注：固定前，贴壁细胞或组织应予以解离并处于单细胞悬液中。

注：最佳离心条件会根据细胞类型和试剂容量变动。一般，1-5 分钟 150-300g 将足以使细胞沉淀下来。

注：如果使用全血，则在固定前裂解红细胞并通过离心来洗涤。

注：如果表位被甲醛和/或甲醇破坏，可以在固定前添加靶向 CD 标记物或其他胞外蛋白质的抗体。在固定和透化过程期间，这类抗体将保持与目的靶标结合。但注意，某些荧光团（包括 PE 和 APC）会被甲醇损坏，因此不应在透化前添加。如果您不确定，请进行小规模实验。

  1. 通过离心使细胞沉淀下来，移除上清液。
  2. 按每 100 万个细胞大约 100 µl 4% 甲醛重悬细胞。混匀以解离沉淀物并防止各个细胞交联。
  3. 室温 (20-25°C) 固定 15 分钟。
  4. 通过离心用过量 1X PBS 洗涤。将上清液弃于合适的废液缸中。以 0.5-1 ml 1 X PBS 重悬细胞。继续进行透化步骤。
    1. 或者，细胞可在 1X PBS 中 4°C 保存过夜。

C. 透化

  1. 通过温和涡旋混合的同时，向预冷的细胞中缓慢添加冰冷的 100% 甲醇至 90​% 甲醇终浓度，使细胞透化。
  2. 在冰上透化最短 10 分钟。
  3. 继续进行细胞免疫染色（D 部分）或将细胞 在 90% 甲醇中 -20°C 保存。

D. 免疫染色

注：使用血细胞计数器或备选方法计数细胞。

  1. 将所需数目的细胞分装入试管或小孔中。（通常，每次测定 5 x 105 至 1 x 106 个细胞。）
  2. 通过离心以过量 1X PBS 洗涤分离，以去除甲醇。将上清液弃于合适的废液缸中。如有必要，可重复进行。
  3. 在 100 µl 稀释的一抗中重悬细胞，这种一抗按建议的稀释度或如通过滴定所确定那样以抗体稀释缓冲液配制。
  4. 室温孵育 1 小时。避光。
  5. 在抗体稀释缓冲液或 1X PBS 中通过离心洗涤。弃去上清液。重复。
  6. 在 200-500 µl 1X PBS 中重悬细胞，并在流式细胞分析仪上分析。

发布​时间 2009 年 7 月

修订时间 2020 年 6 月

实验步骤编号：407

特异性/灵敏度

Pan-Keratin (C11) Mouse mAb (Alexa Fluor® 594 Conjugate) 可检测总角蛋白 4、5、6、8、10、13 和 18 的内源水平。该抗体不与其他角蛋白发生交叉反应。

物种反应性：

人, 小鼠, 大鼠, 猴

来源/纯化

使用 A431 细胞的细胞骨架制剂对 BALB/c 小鼠进行免疫接种来产生单克隆抗体（同种型：IgG1）。

背景

角蛋白（细胞角蛋白）是主要在上皮细胞中表达的中间丝蛋白。Keratin heterodimers composed of an acidic keratin (or type I keratin, keratins K9-K28) and a basic keratin (or type II keratin, keratins K1-K8 and K71-K80) assemble to form filaments. Keratin isoforms demonstrate tissue- and differentiation-specific profiles that make them useful as research and clinical biomarkers (1,2).

Dysregulation/mutations in keratin genes can lead to a variety of disorders affecting the skin, hair, nails, and other epithelial tissues (3). While expression of keratins can be variable, immunohistochemical staining of keratins is widely used to help in the identification and classification of epithelial tumors, and may also provide prognostic information.

Keratins 8 and 18 (K8/K18) are expressed in simple epithelia of normal tissue, as well as in adenocarcinomas of the breast, lung, ovary, and gastrointestinal tract. Keratin 17 is expressed in basal keratinocytes of stratified epithelia, hair follicles, and sebaceous glands. Onset of keratin 17 expression coincides with the definition of major epithelial lineages during skin development (4). Keratin 14 (K14) is expressed in basal cells of stratified epithelia, and in basal-like subtypes of breast cancer and squamous cell carcinomas. Keratin 19 (K19) is expressed in glandular epithelia, including the liver, gallbladder, and pancreas, as well as in adenocarcinomas of the breast, thyroid, and bile duct. Keratin 20 (K20) is expressed in gastrointestinal epithelium, urothelium, and Merkel cells in the skin, as well as in colorectal carcinomas and some urothelial carcinomas. Keratin 5/6 (K5/6) is expressed in basal cells of stratified epithelia, including the skin, prostate, and breast, as well as in basal-like breast cancers, squamous cell carcinomas, and some lung carcinomas. Keratin 7 (K7) is expressed in glandular epithelia, such as those in the lung, breast, and female reproductive tract, as well as in adenocarcinomas of the lung, breast, and ovary (5,6).

Keratins, particularly K8, K18, and K19, serve as biomarkers for identification of circulating tumor cells (CTCs) (5).

Post-translational modifications, including phosphorylation, acetylation, ubiquitylation, sumoylation, glycosylation, and transamidation, have been shown to affect the functions of keratins in normal and disease states (6). Understanding the molecular mechanisms underlying these PTMs may provide insights into cancer pathogenesis.

有限使用

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